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检测两种蛋白质之间相互作用的实验方法比较
1.生化方法免疫共沉淀免疫共沉淀是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的・用于研究蛋白质相互作用的经典方法改法的优点是蛋白处于天然状态,蛋白的相互作用可以在天然状态下进行,可以避免认为影响;可以分离得到天然状态下相互作用的蛋白复合体缺点免疫共沉淀同样不能保证沉淀的蛋白复合物时候为直接相互作用的两种蛋白此外灵敏度不如亲和色谱高•Far-Western又叫做亲和印记将PAGE胶上分离好的凡百样品转移到硝酸纤维膜上,然后检测哪种蛋白能与标记了同位素的诱饵蛋白发生作用,最后显影缺点是转膜前需要将蛋白复性
2.等离子表面共振技术Surface plasmonresonance该技术是将诱饵蛋白结合于葡聚糖表面,葡聚糖层固定于几十纳米厚的技术膜表面当有蛋白质混合物经过时,如果有蛋白质同“诱饵”蛋白发生相互作用,那末两者的结合将使金属膜表面的折射率上升,从而导致共振角度的改变而共振角度的改变与该处的蛋白质浓度成线性关系,由此可以检测蛋白质之间的相互作用该技术不需要标记物和染料,安全灵敏快速,还可定量分析缺点需要专门的等离子表面共振检测仪器用的复合物的量也相应增多如果你手头没有这两种蛋白的抗体,可以把这两种蛋白的一端分别加之标签以融合蛋白形式表达,然后用商业化的抗标签抗体进行免疫共沉淀和Western blotting检测2细胞内源性蛋白的免疫共沉淀把两种蛋白共转染到COS细胞内进行过表达,进行免疫共沉淀实验,相对容易成功,但是这一结果毕竟具有人工性,不能代表生理条件下真正的蛋白质相互作用要想克服这一弱点,可以做内源性的免疫共沉淀实验这一技术要求极高,难度极大,但也最有说服力因为细胞内内源性蛋白含量低,结合在一起形成复合物的量更低,难以检测首先要证明所选择的细胞93系是否具有这两种内源性的蛋白此外,用于免疫沉淀和Western blotting检测的体要好细胞裂解、采集以及免疫沉淀时时条件要温和,以保持蛋白复合物的天然结构3组织内蛋白的免疫共沉淀在体外可以大量培养细胞,然后制备细胞提取物,做内源性免疫共沉淀由此可以推广到做组织内免疫共沉淀取动物组织脑、肝、脾等,切碎,匀浆,提取组织蛋白,进行免疫共沉淀实验这一结果代表活体中蛋白质相互作用4,蛋白质细胞内定位实验17-22另一种时常用来检验蛋白质相互作用的方法是蛋白质细胞内定位技术此法较为直观,可以看到两种有相互作用的蛋白质在细胞内的分布(膜上、胞浆、胞核或者其它细胞器等等)以及共定位的部位(在膜上共定位、在胞浆中某一部位或者核内共定位等等)O有时相互作用的蛋白由于细胞内某种功能的需要结合在一起时,使得两种蛋白的分布发生变化比如,某种蛋白也许在核内,当它与另一种具有穿梭功能的蛋白结合时,有可能被转运到胞浆中这种情况的共定位则较为典型在进行蛋白质共定位
(1)利用有色荧光蛋白标记技术进行蛋白定位研究此法也可称为活细胞定位把两种具有相互作用的蛋白分别克隆到带有两种不同颜色荧光荧光显微镜直接观测在进行精确细胞定位或者共定位时,必须用共聚焦荧光显微镜观测因为共聚焦荧光显微镜(相当于医院给病人诊断的CT)观测的是细胞内一个切面上的颜色如果在一个切面上在同一区域看到两种颜色,就提示这两种蛋白在该区域内有相互作用普通荧光显微镜看到的是一个立体图象,无法确定蛋白质共定位现象在进行定位或者共定位同时,也可以对细胞核进行染色这样,在细胞中就有三种颜色细胞核的显色匡助你确定共定位发生的位置上面介绍的活细胞定位,其优点是表达的荧光蛋白荧光强,没有背景,观测方便但缺点是相互作用的蛋白由于标上荧光蛋白,实际上是两个融合蛋白精品文档融合蛋白的定位结果或者共定位结果是否与天然蛋白分布一致,有待于进一步确定而利用免疫荧光标记技术可以避免这一缺点
(2)利用双色或者多色染色的免疫荧光技术进行蛋白定位研究免疫荧光的原理是,首先把细胞进行固定,然后用待检测靶蛋白的抗体(一抗)与细胞内靶蛋白进行免疫反应,再用荧光素(如FITC和TRITC等)标记的二抗与一抗进行反应这样就在细胞内形成免疫复合物(靶蛋白----------抗一-二抗),结果靶蛋白被标上颜色,然后可用共聚焦荧光显微镜观测定位与共定位结果免疫荧光技术最大优点就是可用来检测细胞内源性蛋白的定位及相互作用固然也可以对靶细胞进行转染表达目的蛋白,然后标记目的蛋白进行观测免疫荧光技术的缺点是荧光相对94较弱并且背景较高,结果受到干扰,所以这项技术不好掌握为了结果的可靠性,要求严格设
3.双杂交技术原理基于真核细胞转录因子的结构特殊性,这些转录因子通常需要两个或者以上相互独立的结构域组成分别使结合域和激活域同诱饵蛋白和猎物蛋白形成融合蛋白,在真核细胞中表达,如果两种蛋白可以发生相互作用,则可使结合域和激活域在空间上充分接近,从而激活报告基因缺点自身有转录功能的蛋白会造成假阳性融合蛋白会影响蛋白的真实结构和功能不利于核外蛋白研究,会导致假隐性
5.荧光共振能量转移技术指两个荧光法色基团在足够近«100埃)时,它们之间可发生能量转移的现象荧光共振能量转移技术可以研究份子内部对某些刺激发生的构象变化,也能研究份子间的相互作用它可以在活体中检测,非常灵敏,分辩率高,能够检测大份子的构象变化,能够定性定量的检测相互作用的强度缺点此项技术要求发色基团的距离小于100埃此外设备昂贵,还需要融合GFP给蛋白标记此外还有交联技术(cross—linKing),蛋白质探针技术,噬菌体展示技术(Phage display)以及生物信息学的方法来检测蛋白质之间相互作用1,酵母双杂交1-5酵母双杂交系统是将待研究的两种蛋白质的基因分别克隆到酵母表达质粒的转录激活因子(如GAL4等)的DNA结合结构域基因和转录激活因子(如GAL4等)激活结构域基因,构建成融合表达载体,从表达产物分析两种蛋白质相互作用的系统酵母双杂交的原理是,把报告基因HIS3和1a cZ整合到酵母细胞基因组中,并受转录因子GAL4的调控表达一旦GAL4蛋白结合到HIS3和1a cZ调控序列相应的位点,则启动报告基因的表达通过检测报告基因的表达判断阳性或者阴性实际应用中,把GAL4基因分成两个部分DNA结合区gal4DNA bindingdomain,GBD和激活区gal4activating domain,GAD分别把GBD和GAD构建到两个不同的载体上,并能表达相应的两个融合蛋白GBD-X和GAD-Y o然后把GBD-X和GAD-Y两种载体共转染到带有报告基因的酵母细胞中当GBD-X融合蛋白中X蛋白与GAD-Y融合蛋白中Y蛋白发生相互作用时或者结合在一起时,就使得原本分开的GBD和GAD蛋白挨近并具有完整的GAL4蛋白的功能,从而能够激活报告基因的表达1筛选相互作用的蛋白酵母双杂交技术能用于对cDNA文库的筛选把你要研究的蛋白亚克隆到GBD载体上,作为“诱饵”蛋白把文库蛋白基因亚克隆到GAD载体上然后就可以在文库中寻觅那些能够与“诱饵”蛋白可以相互作用的蛋白也许你能够筛选到多株阳性克隆虽然酵母双杂交技术具有广泛的应用价值,但正如任何其它技术一样,酵母双杂交技术也有一定的局限性酵母双杂交技术最大的弱点就是假阳性浮现率所以筛选到的阳性克隆需要进一步的鉴定和功能数据支持
(2)确定参预结合作用的结构域或者motif当你确定了两个蛋白质份子之间有相互作用后,利用酵母双杂交技术可以精细研究蛋白质份子中那些结构起结合调节作用你可以先把一个蛋白进行随机缺失,制备一系列缺失体,然后来检测这些缺失体与另一个蛋白质结合力的大小,直到发现在蛋白质两两份子间起决定作用的氨基酸序列(称为结构域或者motif)o如果一个蛋白份子中具有已知的结构域或者motif,也一样进行缺失,看是否这些已知的结构域或者motif参预结合调节作用有的情况下蛋白质相互作用可能与蛋白质的磷酸化状态有关这时就需要对可能的磷酸化位点进行点突变,检测这些磷酸化位点是否参预调节蛋白质的结合作用2,GST沉淀实验(GST-pull down实验)(细胞外蛋白质相互作用)5-11上面提到,用酵母双杂交方法筛选到的蛋白需要作进一步的鉴定鉴定方法之一就是GST沉淀实验GST沉淀实验主要是用来证明蛋白质胞外的相互作用蛋白质在胞外的相互作用排除了酵母细胞内复杂体系的干扰,,比较直接地检验蛋白质份子之间存在的物理的相互作用同酵母双杂交实验一样,运用此法也可以证明相互作用的蛋白份子中是否有参预调节作用的结构域或者motifo GST沉淀实验原理就是,把你要研究的蛋白基因亚克隆到带有GST谷胱甘肽转移酶基因的原核表达载体中,并在细菌中表达GST融合蛋白GST-Xo把GST融合蛋白挂到带有GST地物的Sepharose beads上,然后把另一种蛋Y白加入其中由于蛋白质之间的结合作用,形成为了这样的复合物GST-X——Yo这一复合物与固体支持物Sepharosebeads又结合在一起,可以被沉淀下来此法又有在不同情况下的具体应用,以下一一作介绍1GST融合蛋白与重组蛋白的相互作用GST融合蛋白是在原核表达的,所以没有经过过多的象真核细胞内具有的蛋白修饰作用所以另一种用来检验相互作用的蛋白也可以用原核表达出来,也就是所谓的重组蛋白当GST融合蛋白把重组蛋白沉淀下来,然后用重组蛋白的抗体作Western blotting检测2GST融合蛋白与体外TNT系统合成的多肽或者蛋白的相互作用用来检验与GST融合蛋白相互作用的蛋白或者多肽也可以用TNT体外蛋白合成体系进行合成,并且还可以在要合成的蛋白或者多肽N端或者C端加之便于检测的标签GST融合蛋白沉淀下来的蛋白或者多肽可以用该蛋白或者多肽的抗体或者标签抗体进行Western blotting用Western blotting检测如果蛋白之间结合力非常弱,检测方法难以检测到,你可以在TNT体外合成时给蛋白进行同位素(S32)标记这样沉淀下来的蛋白进行放射自显影,检测灵敏度将极大提高3GST融合蛋白与细胞内源性蛋白质的相互作用GST融合蛋白还可以把细胞提取物中有相互作用的内源性蛋白质沉淀下来如果内源性蛋92白含量低或者结合力弱,可以采用脉冲法使细胞在某一段时间内合成的所有蛋白都标记上放射性同位素(S32),然后提取细胞总蛋白与GST融合蛋白温育GST融合蛋白沉淀下的带有放射性标记的蛋白跑电泳,进行放射自显影
(4)GST融合蛋白与细胞内瞬时表达的蛋白质的相互作用当内源性蛋白质含量低,并且有可能影响蛋白质的相互作用,也可以把该蛋白的基因转染到靶细胞内进行过表达,然后检验蛋白质相互作用
(5)GST融合蛋白与待测蛋白的相互作用有可能与待测蛋白的磷酸化状态有关在进行GST沉淀实验时,有时也会遇到比较复杂的情况,具体情况具体分析,分别对待比如,两个蛋白质之间发生相互作用时有可能与蛋白磷酸化状态有关或者蛋白首先被磷酸化后方能产生相互作用,或者磷酸化的蛋白必需脱磷酸化后才干产生相互作用如果你确实在你的实验中发现了其中一种情况,这将是一个非常故意义的结果3,免疫共沉淀(co-immunoprecipitation)(细胞内蛋白质相精品文档互作用)9-16免疫共沉淀技术用来证明蛋白质在胞内是否有相互作用普通来说,两种蛋白在细胞内发生相互作用时会形成两种蛋白的复合物,这样就可以先用一种蛋白的抗体把免疫复合物沉淀下来,然后用另一种蛋白的抗体进行Western blotting检测,看两种蛋白之间是否确实形成免疫复合物,并能与protein A/G agarose一起沉淀下来免疫共沉淀原理简单,但技术极其复杂因为细胞内蛋白种类繁多,制约因素多如果两种蛋白之间可以发生相互作用,并非这两种蛋白所有份子都参预结合作用,也可能只有极少部份蛋白份子结合在一起(足以满足细胞功能需要)在提取细胞蛋白时,如果条件不当就会破坏两种相互作用蛋白形成的复合物的稳定性使得免疫共沉淀实验失败如果两种蛋白在细胞内的结合力确实非常弱,那末免疫共沉淀也难以成功如果知道发生相互作用的两个蛋白都是胞核蛋白,那末可以通过提取核蛋白,再进行免疫共沉淀实验,这样会大大减低背景的干扰关于两种蛋白质之间胞内的相互作用,有时确实无法用免疫共沉淀实验证明
(1)细胞内过表达蛋白的免疫共沉淀证明蛋白质胞内相互作用时,可以选择一个高效瞬时过表达系统(至于这一系统是否有内源性靶蛋白无关紧要)普通采取cos细胞作为真核表达株把两种蛋白基因共转染到cos细胞内进行表达由于人为进行大量表达,所以在胞内两种蛋白形成相互作。